Ошибки медсестры при заборе крови

В практике клинициста бывают неординарные ситуации, связанные с лабораторными исследованиями. Врач назначает анализы и получает результаты, совершенно не укладывающиеся в клиническую картину. Например, пациент тяжелый, и логично, что должны быть изменения, но их нет. Или наоборот, здоровый человек проходит медосмотр, а у него показатели общего анализа крови за пределами нормы. Как правило, основной причиной подобных казусов являются дефекты преаналитического этапа. 

О наиболее распространенных ошибках при заборе венозной крови для диагностических исследований рассказала заведующая клинико-диагностической лабораторией Городской гинекологической больницы Минска Дина Жуковская. 

Лабораторная диагностика

Почти 80 % ошибок при лабораторных исследованиях происходит на преаналитическом этапе, т. е. до того момента, как образцы биологического материала поступают в лабораторию. Их можно разделить на 3 группы:

• неправильная предварительная подготовка пациента к сдаче анализа,

• несоблюдение инструкций и технических требований в момент забора крови,

• нарушение условий при транспортировке образцов в лабораторию.

Основным регламентирующим документом, в котором подробно прописаны преаналитический этап и все требования к нему, является «Инструкция о порядке организации преаналитического этапа лабораторных исследований», утвержденная приказом Минздрава № 1123 от 10.11.2015.

Дина Жуковская:

Кровь из вены или из пальца?

Дина Жуковская:

Венозная кровь является лучшим биологическим материалом для гематологических, биохимических, гормональных, серологических и иммунологических показателей. В настоящее время практически все исследования выполняются из венозной крови, это стандарт.

Исследование капиллярной крови из пальца у взрослых и детей, пяточки у новорожденных допускается только в случаях, когда технически затруднена возможность венопункции:

• при ожогах большой площади,

• склонности пациента к венозному тромбозу,

• выраженном ожирении,

• острых состояниях, связанных с гипотонией, и др.

В зависимости от цели может проводиться анализ цельной крови, сыворотки или плазмы крови. В пробирках или системах, предназначенных для каждого вида, находятся коагулянты/антикоагулянты. 

Маркировка и антикоагулянты

Согласно приказу Минздрава № 1123, к применению разрешены два типа стандартных одноразовых систем:

• шприц-пробирка с поршневым или вакуумным способом забора крови,

• вакуумная система.

Каждая из них имеет несколько вариантов:

• по виду исследования,

• реагенту-наполнителю,

• размеру,

• объему пробы.

Вакуумные системы исключают контакт персонала с кровью пациента. Они подлежат процедуре государственной регистрации для применения в учреждениях здравоохранения (как государственных, так и коммерческих).

Дина Жуковская:

По международным стандартам сейчас все одноразовые вакуумные системы промаркированы крышками по цвету, чтобы средний медперсонал не мог случайно перепутать. При заборе сразу нескольких видов анализов наполнение пробирок должно быть строго последовательным. Вначале берется кровь в пробирки без антикоагулянтов, затем — с антикоагулянтами во избежание загрязнения ими иглы.

Желтый. Перед доставкой в лабораторию эти пробирки необходимо отцентрифугировать и получить сыворотку — идеальный биологический материал для определения биохимических показателей, гормонов, онкомаркеров. Современные системы для транспортировки сыворотки содержат специальный гель, который отделяет чистую сыворотку от сгустков эритроцитов и предотвращает смешивание. Если в учреждении систем с гелем нет, то перед транспортировкой полученную сыворотку нужно переместить во вторичную пробирку.   

Голубой. В системе содержится антикоагулянт — цитрат натрия. Забор крови на коагулограмму проводится только в эту пробирку. Исследуются плазма крови, факторы свертывания, антикоагулянтный потенциал и т. д.

Зеленый. В системе находится антикоагулянт гепарин. При смешивании с гепарином цельной крови полученный образец исследуется на газы крови, так называемый анализ КОС (кислотно-основное состояние), и другие биохимические показатели. 

Фиолетовый. В системе находится консервант ЭДТА. Используется цельная кровь при самом распространенном, простом и в то же время информативном ОАК, иммунологическом определении группы крови. Также может использоваться плазма при некоторых клинико-химических исследованиях.  

Помимо систем важен грамотный выбор диаметра иглы, которой берется кровь. Какие вены какими иглами пунктировать? Этот навык возможно приобрести только постоянной практикой и накоплением опыта. Существуют современные системы с камерой визуализации, что позволяет в момент пункции видеть, попала ли игла в вену. 

Некоторые медсестры с большим опытом применения обычных пробирок для забора крови и техники перетягивания вен жгутом испытывают неуверенность при использовании одноразовых вакуумных систем. По мнению Дины Жуковской, следует уделять больше внимания обучению этим навыкам и закреплению их на курсах повышения квалификации.

Важный момент — перемешивание

 

При заборе венозной крови нужно не только наполнить нужную пробирку, но и правильно перемешать, чтобы произошел контакт крови с антикоагулянтом, напыленным на стенках.

Техника перемешивания крови с антикоагулянтом тоже имеет значение. Не нужно пробирку трясти, взбалтывать, необходимо сделать около 10 ротирующих движений, затем перейти к наполнению следующей пробирки.

Дина Жуковская:

Сколько крови брать?

Вакуумные одноразовые системы облегчают задачу: нужный объем четко обеспечивается вакуумом. Но есть нюансы: при соблюдении техники забора скорость наполнения пробирки будет такой, что она заполнится ровно до метки. Только в этом случае достигается правильное соотношение кровь/антикоагулянт. 

Если в момент пункции вены и забора крови возникают препятствия (медсестра долго не может попасть в вену, начинает искать другую вену, кровь идет плохо из-за неадекватно подобранного диаметра иглы), то правильное соотношение кровь/антикоагулянт не будет достигнуто. Такой образец не следует отправлять в лабораторию!

Дина Жуковская:

 

Что делать, если медсестра не может попасть в вену?

Помогают более опытные сестры, обычно это медсестры-анестезисты.

Если пациенту назначен только ОАК, а у него очень плохие вены, то допускается забор капиллярной крови.

В случае тяжелого состояниях пациента, срочной необходимости анализа и невозможности обеспечить венозный доступ к периферическим венам выполняется катетеризация центральных вен. Это делается врачом, чаще всего в отделениях реанимации.

Дина Жуковская:

Из отделения звонят нам, и наш фельдшер-лаборант берет кровь из пальца. Но, повторюсь, такой вариант подходит лишь для общего анализа крови. Для всех остальных исследований нужна только венозная кровь. Если возможно перенести анализ на следующий день, то лучше так и поступить, особенно если пациент нервничает.

За рубежом пациентам в стационарах, как правило, ставят периферические катетеры, которые используются для внутривенных инфузий лекарственных средств. Это удобно и для персонала, и для пациента, особенно если назначений много. У нас такой подход пока не получил повсеместного распространения, хотя тоже применяется, особенно в педиатрической практике. 

Особенности взятия образца крови из катетера

Взятие образцов крови для исследований из установленного ранее катетера для внутривенной инфузии лекарственных средств допускается, но только при строгом соблюдении определенных условий.

Запрещен забор крови для исследования системы гемостаза (коагулограмма) из катетера, обработка которого проводилась гепарином. Необходимо обеспечить другой венозный доступ.

В катетере есть так называемая гепариновая заглушка, когда для предотвращения тромбирования вводится гепариновый раствор с физраствором в соотношении 100:1. Поэтому перед взятием крови на исследование из катетера его следует промыть физраствором в объеме, равном объему катетера, и обязательно утилизировать первые 5 мл взятой из катетера крови. Нужно, чтобы даже следов гепарина не оказалось в образце!

Дина Жуковская:

Иначе мы получим неадекватный результат, в частности, нехарактерное удлинение АЧТВ. Иногда мы вообще не можем определить этот показатель, потому что кровь совсем не сворачивается, и понятно, что у живого человека такого не может быть. В таком случае звоним в отделение или пишем в примечании: «Повторите коагулограмму. Вероятно попадание гепарина в образец».

У тяжелых пациентов в ОРИТ: при крайней необходимости срочного взятия образца крови на общий анализ у пациента, который в это время находится на инфузии через венозный или артериальный катетер, кровь берется из другого доступа. Медсестра обязательно должна указать в сопроводительном бланке факт того, что кровь бралась в момент инфузии, а также лекарственное средство. В лаборатории при выдаче результата будет учтен момент делюции (разведения) пробы. 

Транспортировка образцов

Доставка образцов с биоматериалом в лабораторию осуществляется в наиболее возможный короткий промежуток времени.

В учреждении со своей лабораторией герметично закрытые пробирки, установленные вертикально в штативы, относятся в лабораторию.

При транспортировке в централизованную лабораторию штативы с образцами крови помещаются в специальные промаркированные термоконтейнеры, оборудованные хладагентами для поддержания температуры 2–8 °С.

Основные требования при транспортировке: избегать перепадов температур, резких колебаний, воздействий прямых солнечных лучей, нахождения рядом с нагревательными приборами или оборудованием.

Дина Жуковская:

Недочеты, которые встречаются на данном этапе, обычно происходят в момент сбора образцов в отделении. Так, приходилось наблюдать ситуации, когда штативы стояли на подоконнике над батареей отопления или на столе у окна под яркими солнечными лучами. Конечно, клетки, ферменты в пробирках разрушаются — и качество таких образцов резко снижается.

 

Самое главное — достоверный результат

Дина Жуковская:

Согласно данным ВОЗ, более 70 % врачебных решений принимается на основании результатов лабораторных исследований. Они помогают поставить верный диагноз, назначить эффективное лечение, а в экстренной ситуации — коренным образом повлиять на тактику оказания помощи и спасти пациенту жизнь. Но самое главное в данном процессе — получить достоверные результаты. Они зависят от совместных усилий врачей, среднего медперсонала, специалистов лаборатории. В нашем учреждении этот процесс хорошо отлажен.

Introduction:

Around 60-70% of diagnostic and therapeutic decisions are based on blood exams. Several errors occur during the pre-analytic phase.

Aims:

of this study were: to describe nurses’ behaviours in blood specimen collection; to describe prevalence and type of pre-analytical errors; to assess the association between pre-analytical errors and occurrence of unsuitable specimens.

Methods:

An observational cross-sectional study was conducted by means of a structured form based on up-to-date clinical recommendations. A researcher observed nurses’ behaviors during 172 blood sampling procedures in medical, surgical and emergency care settings. Unsuitable procedures were registered.

Results:

Most behaviours were correct, however some significantly diverged from recommended practices: active and passive patient identification; respect of antiseptic solution’s drying time; rapid removal of tourniquet when blood started flowing. The prevalence of unsuitable specimen reports was significantly higher when the procedure involved a small calibre vein (RP: 0.19; IC95% 0.04 — 0.98; p = 0.03) and when blood drawing was difficult (RP; 3.83; IC95% 1.63 — 9.01; p <0.001).

Conclusions:

The pre-analytical phase is important for the diagnostic process and safety of patients. Although some factors – as patients’ characteristics – are non-modifiable, some nurses’ behaviours could be improved to reduce risk of pre-analytical errors. Further studies are needed to clarify the associations between pre-analytical errors and laboratory outcomes.

Типичные ошибки, возникающие при работе с вакуумными контейнерами

1.
Кровь не поступает в пробирку.

Возможные
причины: конец иглы вплотную прилегает
к стенке вены; игла проколола вену
насквозь; игла не полностью вошла в
вену; жгут затянут слишком туго или
намного выше места взятия крови.

Способ
решения проблемы: аккуратно повернуть
иглу, не вынимая иглу из вены; аккуратно
потянуть иглу вместе с иглодержателем,
не вынимая иглу из вены; аккуратно
надавить на иглу вместе с иглодержателем,
не вынимая иглу из вены; снять жгут;
заменить пробирку на новую (пробирка
уже использовалась либо была предварительно
открыта, либо пробка пробирки была
проколота до того, как игла вошла в
вену).

2.
Ток крови быстро прекращается, не
наполнив пробирку.

Возможные
причины:

• Пробирка
  была слишком быстро снята с иглы и
  вынута из держателя.

• Всасывание
  крови в пробирку слишком быстро для
  вены (коллапс вены).

• Игла
  повредила вену в процессе венепункции
  или игла прошла вену насквозь.

Способ
решения проблемы: вставить пробирку
обратно на иглу и оставить до тех пор,
пока в пробирке полностью не компенсируется
вакуум (наполнив пробирку, ток крови
прекратится); вытащить пробирку из
держателя на секунду, а затем снова ее
вставить; повторить венепункцию в другом
месте, где нет гематомы.

3.
Гемолиз крови в пробирке.

Возможные
причины:

• Слишком
  сильное сдавливание вены (больше 1
  минуты).

• Перенос
  крови в пробирку с помощью шприца.

• Слишком
  интенсивное перемешивание образца.

• Пробирка
  неадекватно заполнена.

Способ
решения проблемы: наложить жгут не
более, чем на 1 минуту; использовать
специальные двусторонние иглы для
вакуумных пробирок; аккуратно перевернуть
пробирку 6-8 раз.

После
забора крови процедурная медсестра
должна указывать время и дату забора
крови и ставить свою подпись в направлении.
В ИОККДЦ эти условия введены в ЛИС и
контролируются автоматически.

Центрифугирование образцов крови

Центрифугирование
свернувшейся крови для получения
сыворотки или плазмы производится в
течение 10-15 минут при ускорении от 1000
до 2000 g.
Для получения плазмы, свободной от
тромбоцитов, требуется центрифугирование
в течение 15-30 минут по 2000-3000 g.
При исследовании свертывания цитратную
цельную кровь следует центрифугировать
при 2000 g
в течение 15 минут. Температура от 20-22
⁰С.

Образцы
не должны подвергаться повторному
центрифугированию после отбора проб
сыворотки или плазмы.

Образцы,
взятые в пробирки с разделительным
гелем, никогда не следует подвергать
повторному центрифугированию.

Убедитесь,
что пробирки вставлены в ротор таким
образом, что крышка не опирается на
стенки стакана центрифуги, иначе крышка
может соскочить с пробирки.

Визуальный
контроль адекватности центрифугирования
перед проведением анализа представлен
на рисунке 16.

Рис.
16. Визуальный
контроль центрифугирования образцов
крови. Слева направо: недостаточная
скорость центрифугирования; достаточная
скорость центрифугирования.

Расчет оцс

ОЦС
измеряется относительно дна пробирки
при ее горизонтальном положении (ротор
центрифуги имеет свободно вращающиеся
головки).

Для
расчета ОЦС используется следующая
формула:

ОЦС
= 1,118 х 10-5 х rpm²
х r
(см), где rpm
— количество оборотов в минуту, а r
— радиус.

Пример
расчета: 1,118 х 16 (см) х (3000)²
(об/мин) :100000 = 1609,9g

Примечание:
радиус измеряется от центра вращения
до дна пробирки при ее максимально
удаленном расположении.

Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]

• #
• #
• #
• #
• #
• #
• #
• #
• #
• #
• #